Ich bin Informatiker. Ich liebe Biologie, also forsche ich zu biologischen Themen und interessiere mich für PCR. Deshalb habe ich mich entschieden, eine PCR-Maschine zu bauen.
Jetzt ist alles fertig und ich möchte mein erstes Experiment machen, um zu sehen, ob es funktioniert oder nicht. Ich würde mich sehr freuen, wenn mir jemand Tipps zum Testen zu Hause geben könnte. Welches Oligo sollte ich am einfachsten zum Testen verwenden? Ich meine eine Template-DNA zum Testen, die leicht zu finden und zu extrahieren ist.
Sie brauchen ein Genom, das nicht zu komplex ist, was auf etwas Mikrobielles hindeutet. Sie benötigen auch ein gut charakterisiertes Genom: entweder vollständig sequenziert oder mit vielen sequenzierten Genen, um Primer entwerfen zu können. Und schließlich braucht man eine leicht zugängliche Materialquelle für die DNA-Extraktion.
Ich würde entweder Trockenhefe als Quelle für Saccharomyces cerevisiae -DNA oder lebenden Joghurt als DNA-Quelle von Laktobazillen vorschlagen. Sie könnten sogar versuchen, etwas aus Joghurt zu kultivieren, um reine Bakterienkolonien zu erhalten: Da diese aus einer Nahrungsquelle stammen, sollte das Risiko minimal sein.
Sie könnten von einer der traditionellen pflanzlichen DNA-Quellen (z. B. Zwiebeln) in Versuchung geführt werden, aber es kann schwierig sein, die Co-Reinigung von Polysacchariden zu vermeiden, die DNA-verwandte Enzyme hemmen.
Schließlich, wenn Sie einige Bakterien kultivieren oder sogar wenn Sie Trockenhefe verwenden, müssten Sie wahrscheinlich überhaupt keine DNA präparieren. PCR direkt aus Bakterienzellen ist weit verbreitet – der 95 C-Schritt wird ausreichend DNA freisetzen.
später als Antwort auf den Kommentar von OP hinzugefügt
Ich entschied mich, Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus , weil ich das immer wieder in Bezug auf Joghurt fand. Wenn Sie eine Reihe von Joghurts testen würden, könnten Sie meiner Meinung nach ziemlich sicher sein, dass dies vorhanden wäre.
Es gibt 5 veröffentlichte Genome für verschiedene Stämme der Art Lactobacillus delbrueckii , einschließlich der Unterart bulgaricus (verschiedene Stämme) und lactis . Wie unterschiedlich sind sie? Ich beschloss, mir ein Gen anzusehen, und Laktatdehydrogenase schien eine logische Wahl zu sein (es produziert die Milchsäure).
Die vollständige Nukleotidsequenz für das Laktatdehydrogenase-Gen aus Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ATCC 11842 ist hier . Wenn Sie von dieser Seite aus einen BLAST ausführen, der die Suche auf Laktobazillen (taxid 1578) beschränkt, finden Sie tatsächlich Treffer für das Gen von mehreren anderen Genomen. Hier eine repräsentative Auswahl vom Sequenz-Alignment bis zu den am wenigsten ähnlichen Treffern:
Query 99766 CCTTCCACGCTTCTGGAGGTACTGAATTCGCCCTGGCTCAACTGGGCAACGATGCCGGTA 99825
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Sbjct 90616 CCTTCCACGCTTCTGAAGGTACTGAATTCGCCCTGGCCCAACTGGGCAACGATGCCGGTA 90675
Query 99826 TGTACGGTGCCGTTAAGATGGTTCTGTAATTTTGAATGTAAAAAAGCACCAGGCTTTTAA 99885
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Sbjct 90676 TGTACGGTGCCGTTAAGATGGTTCTGTAATTTTGAATATAAAAAAGCACCAGACTTTTAA 90735
Query 99886 AGTCTGGTGCtttttttGTTTATCCTAAAGAGTCCAGGGTTGCCTTTATCGTCGCGGCTG 99945
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Sbjct 90736 AGTCTGGTGCTTATTTTGTTTATTCTAAAGAGTCCAGGGTTGCCTTCATCGTCGCGGCTG 90795
Query 99946 AGGCCCGCATCTTGGCCAATTCGCTGTCATTTAACGGCAATTCCAGTACGTGGCTGATCC 100005
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Sbjct 90796 AGGCCTGCATCTTGGCCAATTCGCTGTCATTTAACGGCAATTCCAGCACGTGGCTGATTC 90855
Query 100006 CTTGTCCGTTGATGATGGCCAGGGTGCCCAGGTAGATCTCATCCTTGATCCCGTATTCCC 100065
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Sbjct 90856 CTTGCCCGTTGATGATGGCCAGGGTGCCCAGATAGATCTCATCCTTGATCCCGTATTCCC 90915
Query 100066 CGTGCAATGGTGCGGAAAGAGGCAGGGCCAGGTCGTTGTTTTCCAAAATGGCCGTCACGA 100125
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Sbjct 90916 CGTGCAATGGCGCGGAAAGAGGCAGGGCCAGGTCGTTGTTTTCCAAAATGGCCGCCACGA 90975
Query 100126 TCTTGGCCAGCATCATGGCCACGCCATAGTAGGTTGCGCCCTTTTTGACGATAATCTCGC 100185
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Sbjct 90976 TCTTGGCCAGCATCATGGCCACGCCATAGTAGGTCGCGCCCTTTTTGCCGATGATCTCGC 91035
Wie Sie sehen können, gibt es einige Unterschiede, aber es sollte kein Problem geben, Primer zu entwerfen, die zu beiden passen (nochmals - dies ist nur ein Teil des Gens). Natürlich möchten Sie vielleicht ein Alignment für alle 5 Sequenzen vornehmen, aber ich hatte den Eindruck, dass zumindest einige der anderen mit der Abfrage identisch waren, obwohl sie von verschiedenen Unterarten stammen. Dies sind sehr eng verwandte Organismen.
In Bezug auf Ihr Experiment schlage ich vor, dass Sie planen, eine Reihe von Joghurts und/oder Vorspeisen als Vorlagequelle zu verwenden. Sie können sie sogar mischen, wenn Ihr Setup Einschränkungen unterliegt.
Schönes Projekt. Wie schneidet Ihre Maschine im Vergleich zu diesem Open-Source-Thermocycler ab ?
Da Sie wahrscheinlich ein paar Oligonukleotid-DNA (Primer) bestellen, würde ich ein paar weitere DNA-Oligos bestellen, die als Vorlage dienen.
Etwas wie das:
oligo 1, primer forward. 5'-AAAAAAAAAAA-3'->
oligo 2, template 3'-TTTTTTTTTTTNNNNNNN[...]NNNNNNNNNNCCCCCCCCCC-5'
oligo 3, template 5'-AAAAAAAAAAANNNNNNN[...]NNNNNNNNNNGGGGGGGGGG-3'
oligo 4, primer reverse <--3'-CCCCCCCCCC-5'
Dies soll Ihnen nur eine Idee geben, die tatsächlichen Sequenzen sollten länger sein, einen ähnlichen GC%-Gehalt und ein ähnliches t-Schmelzen haben. Der Vorteil ist, dass Sie die Komplexität reduzieren und praktisch auf PCR-Inhibitoren verzichten können.
Sie benötigen auch etwas DNA-Polymerase. Vielleicht können Sie sich ein Aliquot von jemandem ausleihen, der in einem Biologielabor arbeitet.
Sie werden sowieso irgendwo Primer und Enzyme bekommen. Die beste Option wäre, ein Plasmid von einem beliebigen Biolabor zu erhalten. Die meisten Plasmide haben spezifische Sequenzen wie die M13-Promotorsequenz , die T7-Terminator/Promotorsequenz usw. Dies sind Standardsequenzen, die von Viren abgeleitet sind, die üblicherweise für Primer-Bindungsstellen für die Sequenzierung verwendet werden. Außerdem sind diese Primer ziemlich standardisiert und für eine einfache PCR optimiert, und Sie können sie ganz einfach bekommen.
DucFabelhaft
Alan Boyd
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