Warum und wie ist die DNA-Synthese so viel schneller als die RNA-Synthese in Bakterien?

Die DNA - Synthese in E. coli ist 20-mal schneller als die RNA- Synthese bei 1000 nt/s gegenüber 50 nt/s . (Mirkin'05)

Ich finde das verwirrend, da die DNA-Polymerisation besser korrekturgelesen werden kann als die RNA-Variante, die zusätzliche Zeit erfordert, da Sie zurückverfolgen, ausschneiden und ersetzen müssen. Außerdem gibt es bei Bakterien fast kein Spleißen , so dass Sie das nicht verlangsamt. Und die 1000nt/s ist eine einzelne Replikationsgabel. Wir sprechen nicht von mehreren Replisomen, die zusammen 1 Knoten pro Sekunde takten.

Gibt es dafür eine Erklärung oder, in Ermangelung von Beweisen, Hypothesen?

(schamlos nicht referenzierte) Hypothese: Die DNA-Synthese muss schneller sein, da Sie riesige Mengen an DNA relativ zu einem einzigen RNA-Transkript replizieren müssen. Ich glaube, dass es bei Prokaryoten nur einen einzigen Ursprung gibt (im Vergleich zu vielen bei Eukaryoten). Wenn es also einen selektiven Vorteil für schnelleres Wachstum / Teilung / Replikation gibt, ist es sinnvoll, dass es einen Unterschied in der Geschwindigkeit gibt
Es macht Sinn, dass die Replikation schnell sein sollte, aber das bedeutet an sich nicht, dass die Replikation schneller sein sollte als die Transkription.
Gute Frage. Wie Luigi vorschlug, würde ich vermuten, dass es mit der Menge an Nukleinsäure zu tun hat, die synthetisiert werden muss. RNAs sind im Vergleich zu DNA winzig, daher gibt es wenig Selektionsdruck für Geschwindigkeit. Außerdem können mehrere RNA-Polymerasen gleichzeitig initiieren, wodurch die Syntheserate effektiv erhöht wird.
Um eine andere Hypothese einzubringen: Beachten Sie, dass Mutationen in der DNA dazu neigen, aufzutreten, wenn RNA-Synthese und DNA-Replikation frontal aufeinander treffen (Antisense) ( nature.com/nature/journal/v535/n7610/full/nature18316.html ). Letztendlich würde dies nahelegen dass - wenn die Geschwindigkeit der DNA-Synthese der Geschwindigkeit der RNA-Synthese ähnlich wäre - es mehr frontale Begegnungen und Mutationen geben würde

Antworten (2)

Ich würde sie nicht Hypothesen nennen, aber die Frage ist faszinierend, und da sie in der Literatur anscheinend ignoriert wird, werde ich ein paar Vorschläge machen.

  1. Vielleicht hat es etwas mit der Erkennung von Beendigungssignalen in Bezug auf selektiven Geschwindigkeitsdruck in den beiden Prozessen zu tun.

Wenn die Verlängerung der RNA-Kette schneller wäre, wäre sie möglicherweise nicht in der Lage, auf die rho-unabhängigen Terminationssignale zu reagieren, von denen angenommen wird, dass sie spezifische Stammschleifen in der DNA sind, die dazu führen, dass die RNA-Polymerase anhält und von der DNA abfällt. Die beschleunigende RNA-Polymerase könnte stattdessen die Schleifen stören. Das Terminationssystem für die DNA-Replikation hat sich möglicherweise viel robuster entwickelt, um eine schnellere Elongation zum Stillstand zu bringen. (Hinweis: Mein Vorschlag einer unterschiedlichen „Robustheit“ bei der Terminierung basiert nicht auf irgendwelchen Daten, es ist reine Spekulation.)

Wenn dies wahr wäre, würde sich die Frage stellen, warum die Transkription kein effizienteres Terminationssystem im Einklang mit der Entwicklung einer intelligenteren RNA-Polymerase entwickelt hat. Vielleicht ist die Antwort hier, dass es keinen selektiven Druck für eine schnellere Transkription gibt – die Rate reicht eindeutig aus, um den Bedarf der Zelle zu decken – während die Rate der DNA-Replikation die Zeit zwischen den Zellteilungen und damit die Wachstumsrate bestimmt, die unterliegt zu selektivem Druck.

  1. Vielleicht hat es etwas mit der Fehlerhäufigkeit in Bezug auf den selektiven Geschwindigkeitsdruck in den beiden Prozessen zu tun.

Zunächst möchte ich klarstellen, dass das Argument des Korrekturlesens in der Frage meiner Meinung nach ein Ablenkungsmanöver ist. Wenn die Ratenreplikation 20-mal so schnell ist wie die Transkription, hat das gelegentliche Backtracking keine große Auswirkung auf den Gesamtunterschied. Allerdings könnten Fehler und Korrekturlesen in einer anderen Erklärung enthalten sein.

Die RNA-Transkription hat kein Korrekturlesen. Die Länge der RNA-Transkripte ist so, dass die Zelle die auftretenden Fehler tolerieren kann. Wenn jedoch die Transkriptionsgeschwindigkeit erhöht wird, ist vernünftigerweise mit einer Erhöhung der Fehlerhäufigkeit zu rechnen, was sich nachteilig auswirken könnte. Die aktuelle Transkriptionsrate kann ein Kompromiss zwischen Effizienz und Genauigkeit sein. Natürlich kann man sich vorstellen, dass sich ein Korrekturlesesystem für die Transkription entwickelt, wenn es notwendig wäre, aber wie oben diskutiert, scheint es keinen selektiven Druck zu geben, wenn die Transkriptionsrate angemessen ist.

Prozessivität kann ein zusätzlicher Faktor sein. Ich bin mir jedoch nicht sicher über die Prozessivität von RNAP.
Ich möchte eine Beobachtung hinzufügen. Prokaryoten unterscheiden sich von uns darin, dass die Übersetzung oft beginnt, bevor die Transkription endet. Prokaryotische Translation verbindet 17-21 aa/s, was bedeutet, dass 51-63 nt/s in mRNA (Wiki) gelesen werden. Dies liegt im Bereich von 40–80 nt/s prokaryotischer Transkription (BioNumbers). Vielleicht gibt es einen Grund, warum sie zusammenpassen.
Es tut uns leid. Ich habe gerade gelesen ( book.bionumbers.org/what-is-faster-transcription-or-translation ), dass die Einzelmolekülmikroskopie gezeigt hat, dass zumindest bei E. coli die meiste Translation nicht mit der Transkription gekoppelt ist.
@Jagoe – Keine Notwendigkeit, sich zu entschuldigen. Die Quelle, die Sie zitieren, war mir nicht bekannt und ist für diese Art von Frage sehr relevant. Wie viele andere hatte ich gedacht, Transkription und Translation seien bei Prokaryoten gekoppelt. Selektive Verwendung von Bildern vielleicht. (Aber ich wünschte, sie würden sich nicht ständig auf The Central Dogma beziehen.)

Dies liegt an der Tatsache, dass die DNA-Polymerase den schnellen Prozess mit 1000 nu/s im Vergleich zur RNA-Polymerase mit 1000–2000 nu/min durchführt, da dieser Prozess ohne Unterscheidung erfolgt und auch DNA pol Exonukleaseaktivität aufweist

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