Kürzlich führe ich Kultivierungsexperimente mit Mikroalgen (Chlorella sp.) zur mathematischen Modellierung des Mikroalgenwachstums in Bezug auf die Zeit durch.
Das Hauptproblem besteht darin, dass eine Analyse des Lipidgehalts in Mikroalgen ein großes Volumen an Kulturmedien pro Datenpunkt erfordert. Vor allem in der frühen Phase der Kultivierung ist die Dichte der Mikroalgen sehr gering, so dass fast 20 % des gesamten Nährmediums verbraucht werden müssen, um nur einen einzigen Datenpunkt zu erhalten. Aufgrund dieser Einschränkung habe ich manchmal nur dreimal gemessen (am Anfang, in der Mitte und am Ende).
Für die genaue Modellierung sind natürlich mehr Datenpunkte erwünscht, was jedoch zu einem enormen Verlust des Mediums führt. Dies kann die Qualität der experimentellen Gesamtergebnisse beeinträchtigen. Das scheint eine Art Kompromiss zu sein. Das Problem ist, dass ich das Reaktorvolumen im Moment nicht vergrößern kann.
Kann jemand empfehlen, wie man in dieser Situation die optimale Stichprobenzahl ermittelt?
Alle Erfahrungen, Ideen oder empfohlenen Papiere sind willkommen.
Danke schön.
Für diese Art von Experimenten, insbesondere wenn es um Modellierung geht, kann es sich lohnen, einen Chemostat oder zumindest einen Turbidostat aufzustellen. Ein Beispiel für eine solche Studie findet sich in: Simultanes Wachstum und neutrale Lipidakkumulation in Mikroalgen von Klok et al. ( Pubmed ).
Alternativ können Sie Lipidfarbstoffe wie Bodipy verwenden, aber diese sind oft sehr schwierig zu verarbeiten und dringen möglicherweise nicht in Ihre Chlorella ein. Nile Red ist auf jeden Fall fast unmöglich quantitativ zu wirken, obwohl es ziemlich umfangreich verwendet wird, siehe Details in dieser Veröffentlichung . Seien Sie sehr vorsichtig, wenn Sie diesen Weg hinuntergehen.
mimat