Wie finde ich miRNA-Bindungsstellen auf einem bestimmten Gen?

Ich versuche, miRNAs zu finden, die an die 3'UTR eines bestimmten Gens binden. Was ist der beste Weg, dies zu tun (d. h. mit einer guten Scoring-Analyse, die von Forschern in diesem Bereich am häufigsten verwendet wird)? Ich würde auch gerne die anderen möglichen Methoden kennen, wenn es mehrere Möglichkeiten gibt, dies zu tun.

Gute Frage hier
Hast du die Antwort bekommen, die du wolltest?
Der bioinformatische Teil Ihrer Antwort ist möglicherweise besser, deshalb habe ich nicht die volle Anerkennung gegeben. Für diejenigen, die auch mehr über Tools zum Auffinden von miRNA-Zielorten wissen möchten, können sie diesen Artikel lesen. Es ist wirklich gut: journal.frontiersin.org/Journal/10.3389/fgene.2014.00023/full Danke, dass du mich übrigens an die Frage erinnert hast.
@ user1445 Ich verstehe nicht, was du meinst? Möchten Sie Details zu diesen Bioinformatik-Tools haben? Wenn Sie das fragen, würde ich die Frage als weit gefasst betrachten. Wie Sie sehen können, braucht es einen ganzen Artikel, um diese Dinge zu erklären.

Antworten (2)

Es gibt einige Tools zur Vorhersage der Bindung:

  1. TargetScan (basierend auf Seed-Match [primär], zusätzlicher Paarung, Sequenzkontext 1 – Nukleotidzusammensetzung um die Stelle herum usw. [sekundär])
  2. miRanda (basierend auf Hybridisierungsstabilität und Seed-Match [primär] und Sequenzkontext [sekundär])
  3. PicTar (fügt eine Schicht evolutionärer Konservierungskriterien hinzu)

1 Kontext bedeutet die Position der Zielstelle in der 3'UTR und die umgebende Nukleotidzusammensetzung (die auch als indirekte Metrik der Sekundärstruktur angesehen wird)

miRanda und TargetScan haben auch Klassen, die als konservierte und nicht konservierte Ziele bezeichnet werden. miRanda meldet miRSVR-Scores und TargetScan meldet Kontext-Scores, aber diese Messungen basieren auf wenigen experimentellen Ergebnissen und könnennicht immer sinnvoll sein. miRSVR basiert auf einer Änderung der Zielexpression bei miRNA-Überexpression/Knockdown. Es verwendet auch Metriken für den Zielseitenkontext. Der Context+-Score von TargetScan umfasst viele Metriken, die neben dem regulären Kontext-Scoring auch die Häufigkeit und Erhaltung von Zielen umfassen. Einige dieser Metriken können nützlicher sein als die anderen. Aber Bewertungen, die nur auf miRNA-OE/KD-Experimenten basieren, können irreführend sein – insbesondere, wenn die Zielexpression nur auf RNA-Ebene quantifiziert wird. Die Zielhäufigkeit variiert auch zwischen verschiedenen Zelltypen. Weitere Einzelheiten zu diesen Metriken finden Sie in den entsprechenden Artikeln zu diesen Tools.

Es gibt einige experimentelle Verfahren zur Zielbestimmung, die hauptsächlich eine Protein-RNA-Vernetzung, gefolgt von einer Immunpräzipitation von Ago und einer anschließenden Quantifizierung durch RNA-Sequenzierung umfassen. Siehe HITS-CLIP und PAR-CLIP . Diese Techniken finden die Ziele nicht wirklich. Alles, was sie tun, ist, die miRNA-Mengen und ihre vorhergesagten Ziele, die an Ago gebunden sind, zu korrelieren (Sie werden nicht genau wissen, ob sich der ternäre mRNA-miRNA-Ago- Komplex wirklich gebildet hat oder nicht).

CLASH ist eine neuere Technik, die versucht, dieses Problem anzugehen, indem mRNA mit miRNA ligiert wird. Auf diese Weise können Sie die miRNA-mRNA-Interaktion erfassen. Allerdings bin ich etwas skeptisch gegenüber CLASH; Ich selbst habe vor einiger Zeit nach diesem Prinzip gearbeitet und mich dieser einen Herausforderung gestellt. CLASH umfasst grob die folgenden Schritte:

  • Protein-RNA vernetzen
  • Immunpräzipitat Ago
  • Verwenden Sie RNAse, um ungebundene mRNA-Regionen zu verdauen (und machen Sie sie klein genug für ein kurzes Lesesequenzierungsexperiment).
  • Ligieren Sie miRNA und mRNA, die mit RNA-Ligase an Ago gebunden sind
  • Bauen Sie Ago unter Verwendung von Protease ab
  • Sequenzieren Sie das miRNA-mRNA-ligierte Paar

Mein Zweifel war, wie miRNA und mRNA ligiert werden würden, wenn der Fußabdruck von Ago größer als eine miRNA ist (gemeldet ~50-60 nt in HITS-CLIP und PAR-CLIP). Wenn die RNA nukleasegeschützt ist, wie kann sie dann für Ligase zugänglich sein? Als ich darüber nachdachte, dachte ich, dass ein teilweiser Proteinabbau notwendig wäre (nach dem RNAse-Schritt und vor dem Ligase-Schritt), um der Ligase etwas Raum zum Handeln zu geben. Irgendwann habe ich nicht weiter daran gearbeitet. Drei Jahre später wurde das CLASH-Papier veröffentlicht und ich war froh, dass jemand es zum Laufen gebracht hat. Aber das Ligase-Problem wurde nicht angesprochen (es scheint funktioniert zu haben, aber ich weiß nicht wie!!).

Um die Vorhersagen zu testen, können Sie einen Reporter-Assay (wie GFP oder Luciferase) verwenden, wobei die 3'UTR stromabwärts des Reporters geklont wird. Diese können auch Artefakte enthalten. Eine Überexpression der miRNA sollte vermieden werden und es sollten Seed-Mutationen durchgeführt werden, um die Targetierbarkeit sicherzustellen.

Eine andere Technik zur Bestimmung einer Ziel-mRNA besteht darin, ihre vorhergesagte miRNA-Bindungsstelle zu maskieren und die Auswirkung auf die Expression zu sehen. Dies wurde bei Zebrafischen unter Verwendung von Morpholinos durchgeführt, die komplementär zu Zielstellen waren, aber nicht bei anderen Modellen AFAIK. Dies scheint mir ein eleganter Assay zu sein - keine Überexpression und Sie können die Zielstelle genau bestimmen.

Ich würde die Literatur über die UTR, an der Sie interessiert sind, gründlich prüfen. Vieles davon wurde bereits für viele genomische Regionen durchgeführt, seit Nextgen Seq begonnen hat.

Sie sollten zunächst Computervorhersagealgorithmen verwenden, die Ihnen dabei helfen, eine gute Kandidatenliste von miRNAs zu erhalten

Die Wechselwirkung zwischen einer miRNA und ihren Ziel-mRNAs wird üblicherweise durch Co-Transfektion eines Reporter-Expressionsvektors untersucht, der die 3'-UTR-Region der mRNA und ein inhibitorisches oder Vorläufermolekül für die miRNA enthält.

Dies misst jedoch nicht die direkte und physikalische Wechselwirkung zwischen einer miRNA und einer spezifischen mRNA. Um die Bindung genauer zu messen, müssen Sie einen ElectroMobility Shift Assay durchführen.

Hier ist ein kommerzielles Tool, das gut funktioniert, wenn Sie nur versuchen, es zu identifizieren.

http://www.activemotif.com/catalog/905/lightswitch-synthetic-mirna-target-reporter-collection

Ich glaube nicht, dass es andere sehr effektive/einfache Methoden gibt.

Ich denke, Sie könnten so etwas wie hybridisieren, den Hyb auf einem Gel laufen lassen, das Band herausholen und es seqen

Danke für die Antwort, aber meine Frage war eigentlich viel einfacher. Im Moment suche ich nur nach einer guten Kandidatenliste von miRNAs. Ich habe dafür eine Website ( microrna.org/microrna/home.do ) gefunden, die auf dem mirSVR-Score basiert. Ist dies eine gute Möglichkeit, Kandidaten-miRNAs auszuwählen? Gibt es andere Möglichkeiten, Kandidaten-miRNAs zu finden, die auf anderen Bewertungsalgorithmen basieren?
Ich dachte, du hättest ein bestimmtes Gen geschrieben?
ja "Im Moment suche ich nur nach einer guten Kandidatenliste von miRNAs für ein bestimmtes Gen (das Gen meiner Wahl)". Also möchte ich ein bestimmtes Gen in der Datenbank auswählen und ich möchte, dass diese Datenbank mir eine Liste von Mirnas zeigt, die an die 3'UTR dieses Gens binden können. Außerdem möchte ich die Rechenschaftspflicht der Mirna-Bindung über eine Bewertungsmethode wie mirSVR sehen. Ich habe bisher nur mirSVR und die genannte Website gefunden, aber gibt es andere Möglichkeiten und wie kann ich in der Literatur am besten danach suchen? Entschuldigung, wenn ich die korrekte Terminologie nicht pflege, ich bin relativ neu darin.