Tipps für längere Fragmentgröße und höhere Reinheit von Insekten-DNA

Ziel

In einem Pilotexperiment habe ich drei verschiedene genomische DNA-Extraktionsmethoden an dem Nicht-Modellorganismus Pieris mannii (südlicher kleiner Weißer; Insecta, Lepidoptera, Pieridae) getestet. Das Ziel bestand darin, DNA-Fragmente mit einer durchschnittlichen Länge von ≥ 30 kbp für die Bibliotheksvorbereitung für die PacBio SMRT-Long-Read-Sequenzierung (HiFi) zu generieren.

Methoden

Die drei verwendeten Methoden/Kits waren: Qiagen Blood & Tissue Kit (Säulen-Assay), Beckman & Coulter DNadvance (Magnetbeads-Kit) und Standard-Phenol-Chloroform-Extraktion.

Laborgezüchtete Organismen im Präpuppenstadium (Ende der Larvenwachstumsphase, nach letzter Ausscheidung von Darminhalt, kein Chitin-Exoskelett) wurden geerntet und bei –20°C eingefroren. Für die DNA-Extraktionen wurden der Kopf und die ersten beiden Beinpaare (ca. 20 mg) geschnitten und gemäß den Kit-/Standardprotokollen mit einigen Modifikationen für DNA mit hohem Molekulargewicht verarbeitet:

  • Vermeidung von Frost-Tau-Zyklen
  • zum Mahlen des Gewebes wurden Stößel verwendet (kein flüssiger Stickstoff)
  • Invertieren statt Vortexen
  • Zelllyse und Proteinase-K-Verdau bei 56°C und 300 U/min über Nacht
  • geplant: Verwendung von Wide Bore Pipettenspitzen (wegen sehr langer Lieferzeit nicht möglich)

Zusammenfassung der Ergebnisse

Methode Durchschn. Bereich der DNA-Fragmentlänge (bp). A260/280-Reihe** A260/230-Reihe** Nanotropfen durchschn. Konz. (ng/µl) Qubit-Durchschn. Konz. (ng/µl)
Qiagen 1038 - 18366 2.07 - 2.12 1,77 - 2,15 1151.8 104.9
Magnetische Perlen 7350 - 12586 1.98 - 2.11 1,60 - 1,76 1048.7 155.8
Phenol-Chloroform 19552 - 27359 2.03 - 2.14 1.94 - 2.10 1389.2 215.4

*bewertet mit Agilent Femto Pulse
**Nanodrop-Ergebnisse

Die DNA-Fragmente scheinen stark geschert zu sein, die Proben sind mit organischen Verbindungen kontaminiert (insbesondere mit den Magnetic-Beads) und der große Konzentrationsunterschied zwischen Nanodrop- und Qubit-Messungen kann auf eine RNA-Kontamination hindeuten.

Fragen

Wie können Länge und Reinheit von DNA-Fragmenten erhöht werden? Welches sind die wichtigsten Maßnahmen? Welche Lebensphase empfehlen Sie?

Ideen:

  • Verwendung von Weithals-Pipettenspitzen
  • Verkürzung der Inkubationszeit (Zelllyse & Proteinase-K-Verdau)
  • Verwenden Sie frisch geschlüpfte Imagines mit weichem Exoskelett, um schleimige Proben nach Zelllyse und Proteinase-K-Verdau zu vermeiden (Grund für Kontaminationen?)
  • RNase-A-Behandlung
das ist eine fantastische Frage. sehr klar und umfassend, informativ und mit effektiver Formatierung, um den Punkt zu verdeutlichen. Ich weiß aber nicht genug, um darauf zu antworten!
Willkommen bei Biology.SE! Stimmen Sie MaximilianPress voll und ganz zu – ich hoffe, Sie werden ein regelmäßiger Mitwirkender. ——— Ich weiß nicht, wie einfach Sie Proben erhalten können, aber Sie müssen möglicherweise alle Ihre Vorschläge ausprobieren (z. B. einen Zeitverlauf für den Lyse-/ProtK-Schritt durchführen) und sehen, was am besten funktioniert. Darüber hinaus ist mein Verständnis, dass der Nanodrop bekanntermaßen anfällig für Ungenauigkeiten ist, daher würde ich dazu neigen, den anderen Ergebnissen mehr zu vertrauen. Sie könnten auch darüber nachdenken, so etwas wie eine konturgeklemmte Elektrophorese mit homogenem elektrischem Feld (CHEF) durchzuführen, um eine Vorstellung von der Größenverteilung Ihrer Fragmente zu bekommen.
Wenn keine Spitzen mit breiter Bohrung vorhanden sind, können Sie versuchen, einen Teil der Vorderseite der Spitze abzuschneiden. Stellen Sie nur sicher, dass die Volumina, die Sie ziehen, nicht verschüttet werden. Offensichtlich können Sie nicht mehr die maximale Lautstärke ziehen.

Antworten (2)

Es ist schwierig, mit Insektenproben zu arbeiten, vor allem, weil sie eine Reihe von Polysacchariden wie Chitin enthalten , die Nukleinsäuren ähnlich genug sind, dass sie gemeinsam ausgefällt werden können. Standardextraktionsverfahren (z. B. Blut-/Gewebekits von Qiagen) handhaben dies nicht ohne einige Modifikationen, um diese Kontaminanten loszuwerden. Der schleimige Aspekt Ihrer Extraktionen ist das Ergebnis dieser Verunreinigungen.

Zu meiner Zeit (vor >20 Jahren) wurden beim Umgang mit Pflanzenproben, die mit Polyphenolen auf ähnliche Probleme stießen, Extraktionen mit modifizierten Phenol-Chloroform-Extraktionen durchgeführt. Die spezifische Form war eine sogenannte PCI (Phenol-Chloroform-Isoamylalkohol)-Extraktion mit zugesetztem B-Mercaptoethanol und Polyvinylpyrrolidon in CTAB (Cetyltrimethylammoniumbromid)-Puffer.

Ich habe schnell nach Insekten-DNA-Extraktionen gesucht und festgestellt, dass ähnliche Protokolle für Insekten für die lange Lesesequenzierung vorhanden sind (siehe Ref. 4 im Link). Es sieht so aus, als ob SDS mit CTAB-Puffer der richtige Weg ist, gefolgt von PC- oder PCI-Extraktion .

Darüber hinaus ist die Messung von DNA- und RNA-Konzentrationen durch Spektrometrie (Nanotropfen usw.) unzuverlässig - diese Methode eignet sich hervorragend, um Informationen über DNA / RNA in Proteinlösungen (der ursprüngliche Zweck der Methode) zu erhalten, ist jedoch für DNA nicht wirklich zuverlässig genug /RNA-Quantifizierung für Gen 3-Sequenzierung (oder Gen 2 für diese Angelegenheit).

Verwenden Sie stattdessen ein Qubit- oder ein anderes Fluoreszenzverfahren zur Quantifizierung und führen Sie Ihre Proben durch einen Bio-Analyzer (Agilent) (Hochgeschwindigkeitselektrophorese, wobei Metriken für die Probe während der Analyse hinzugefügt werden).

Vielen Dank für Ihren Beitrag!

Ich denke, die Antwort von @ bob1 ist gut und deckt viele Grundlagen ab.

Eine Sache, die meiner Meinung nach fehlt, ist jedoch die Verwendung einer Nuklearpräparation als ersten Schritt - meines Wissens nach kann dies bei vielen Problemen mit phenolischen / chitinhaltigen Verunreinigungen in schwierigen Organismen wie Pflanzen / Pilzen / Insekten helfen. Hier ist ein vorgeschlagenes Protokoll .

Ich würde auch empfehlen, zu überprüfen, was sich auf protocols.io befindet. Hier ist ein Protokoll für die HMW-DNA-Präparation von Insekten , und hier ist eine möglicherweise relevante Diskussion .

Diese könnten für einen ganzen Organismus schwierig sein - funktionieren jedoch im Allgemeinen gut aus kultivierten Zellen, und ich vermute, dass Larven ganz gut abschneiden werden, wie das OP verwendet.