Meine Gele sehen in MES (2-(N-Morpholino)ethansulfonsäure) und MOPS (3-(N-Morpholino)propansulfonsäure) deutlich anders aus. Das ist zu erwarten. Was ich nicht verstehe, ist, warum die einfache Anwesenheit des Gegenions die Geschwindigkeit bestimmter Proteine signifikant verändert.
Liegt das am unterschiedlichen pH-Wert (MES wird meist bei pH 8,0 gefahren, MOPS wird meist bei pH 7,0 gefahren) oder ist die Ladungsverteilung auf dem Gegenion für alles verantwortlich?
Nun, um die Kommentare aller zu rationalisieren, denke ich, dass @leonardo Recht hat.
Dies ist ein denaturierendes SDA-PAGE-Gel. Die Migration der negativ geladenen SDS-Micellen hängt von der Abschirmung der sie umgebenden Lösung ab. Der Unterschied in der Mobilität besteht darin, dass die SDS-Micellen bei pH ~6,2 (MES) gegenüber 7,2 (MOPS) einem etwas anderen Feld ausgesetzt sind.
Der Gedanke, dass diese die gleiche Ladung haben, wäre genau bei dem pH-Wert richtig, der dem pKa entspricht. Für diese beiden Ionen sind die Anteile nicht gleich, wenn 0,8 pH-Einheiten von ihren jeweiligen pKas gemessen werden. die Ionenkonzentration geht als +/- log ([BH]/[B-]) und die Ladungsumgebung des Puffers sollte nicht die gleiche sein. Ich denke, dass der höhere pH-Wert für MOPS dazu neigt, mehr negative Ladung in der Lösung aus MOPS-, aber auch OH- in Lösung zu erzeugen, was die Mobilität der Mizellen verlangsamt und die Auflösung der größeren Proteine mit MOPS begünstigt.
Dies ist auch bei gleicher Pufferionenkonzentration gegeben .
Ich bin mir sicher, dass die blutigen Details in den muffigen Wälzern einiger physikalischer Biochemie-Zeitschriften tief in der Bibliothek vergraben sind, aber so klingt es für mich.
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