Ich führe eine Mutagenese an einem Gen in vivo durch, das ich in einen Expressionsvektor ligieren muss. Die Primer, die ich entworfen habe, überlappen Restriktionsstellen, von denen ich plane, sie zu verwenden, um sie in den Expressionsvektor zu ligieren. Die Teile zwischen den Primern werde ich versuchen, Mutanten mit fehleranfälliger PCR zu erzeugen.
Meine Sorge gilt den 3'A-Überhängen, die von der Taq-Polymerase erzeugt werden. Wie verbreitet ist das? Wenn es sehr häufig vorkommt, wie kann ich diese Zusätze am besten berücksichtigen, wenn ich versuche, mein PCR-Produkt in den Vektor zu ligieren?
Ich bin mir nicht sicher, ob Taq keine 3 'A-Überhänge hinzufügt.
Sie könnten TA-Klonierung verwenden, um Ihr PCR-Produkt zu klonen. Das Grundprinzip besteht darin, einen Vektor mit 3'-T-Überhängen zu verwenden. Wenn Sie einen Vektor ohne diese Überhänge haben, können Sie eine Terminale Transferase + dTTPs verwenden, um sie zu erstellen (oder sogar Taq, aber das ist nicht so toll, weil es einen Reinigungsschritt hinzufügt, um die Vektoren mit Überhängen zu isolieren; Terminale Transferase ist viel effizienter ). Sie können dann Ihr PCR-Produkt ligieren, das einen 3'-Überhang hat.
Protokolle zum Hinzufügen der 3'-T-Überhänge zu Ihrem Vektor sind in Zhou und Gomez-Sanchez 2000 angegeben .
Verwenden Sie pGemT , um Ihr PCR-Produkt darin zu klonen. Es ist genau so konzipiert, dass es Produkte mit 3 'Überhängen aufnehmen kann, und verfügt über eine Blau/Weiß-Auswahl, so dass es ziemlich einfach zu machen ist! Dann würden Sie pGem mit den Restriktionsstellen, die Sie während Ihrer PCR hinzugefügt haben, ausschneiden und in Ihren Expressionsvektor ligieren.
Kevin
bobthejoe
blep
WYSIWYG